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細(xì)胞傳代的步驟-貼壁細(xì)胞傳代培養(yǎng)步驟

 更新時(shí)間:2022-11-22 點(diǎn)擊量:1340

    傳代培養(yǎng)是細(xì)胞培養(yǎng)常規(guī)保種方法之一,也是幾乎所有細(xì)胞生物學(xué)實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)。當(dāng)細(xì)胞在培養(yǎng)瓶中長(zhǎng)滿后就需要將其稀釋,分種成多瓶,細(xì)胞才能繼續(xù)生長(zhǎng)。這一過(guò)程就叫傳代。傳代培養(yǎng)可獲得大量細(xì)胞供實(shí)驗(yàn)所需。傳代要在嚴(yán)格的無(wú)菌條件下進(jìn)行,每一步都需要認(rèn)真仔細(xì)的無(wú)菌操作。懸浮型細(xì)胞直接分瓶就可以,而貼壁細(xì)胞需經(jīng)消化后才能分瓶。本實(shí)驗(yàn)以傳代大鼠骨髓充間質(zhì)干細(xì)胞為例進(jìn)行細(xì)胞傳代的步驟做一介紹。

一、傳代前準(zhǔn)備

實(shí)驗(yàn)開始前,將無(wú)菌培養(yǎng)瓶、15ml 離心管、移液管、槍頭等放入無(wú)菌超凈工作臺(tái),紫外線照射 30min,以進(jìn)行工作臺(tái)的消毒。

倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài),確定細(xì)胞是否需要傳代及細(xì)胞需要稀釋的倍數(shù)。

二、胰蛋白酶/EDTA 消化

    從培養(yǎng)箱中取出待傳代的細(xì)胞,75%酒精進(jìn)行瓶口消毒,吸掉培養(yǎng)細(xì)胞的舊培養(yǎng)基。PBS緩沖液洗去殘留的舊培養(yǎng)基,重復(fù)洗兩次。

棄去 PBS,按每 25 平方厘米 1ml 消化液比例加入消化液,消化液中 EDTA 濃度視不同細(xì)胞而定,骨髓干細(xì)胞貼壁特性強(qiáng),比較難于消化,

可提高 EDTA 濃度的方法,本實(shí)驗(yàn)采用0.25%胰蛋白酶加 0.1%EDTA 的消化液證明可以很好地消化,并不會(huì)損傷細(xì)胞。放入顯微鏡

下觀察,待所有細(xì)胞變圓后立即拿入超凈臺(tái)內(nèi),加入 6ml 細(xì)胞培養(yǎng)基終止消化。消化時(shí)間為 1-5 分鐘,具體依細(xì)胞而異。

采用無(wú)菌吸管輕輕吹打細(xì)胞表面,注意吹打全部培養(yǎng)表面,可以按照先左右吹打,后上下吹打的方式,取所有細(xì)胞懸液放入一干凈的 15ml 離心管內(nèi)。每分鐘 800 轉(zhuǎn),室溫離心 5min。

三、細(xì)胞傳代的步驟-制備細(xì)胞懸液及培養(yǎng)  

   吸棄上清液,不要吸到底部的細(xì)胞沉淀。向離心管內(nèi)的細(xì)胞沉淀加入適量培養(yǎng)基。吹打混勻,吹打過(guò)程中盡量不要產(chǎn)生氣泡。

顯微鏡下觀察細(xì)胞分散情況,避免出現(xiàn)細(xì)胞成團(tuán)情況,確定為單細(xì)胞懸液方可進(jìn)行下一步操作。本實(shí)驗(yàn)以 1:2 的比例進(jìn)行分瓶,通常骨髓充間質(zhì)干細(xì)胞一般以 1:3 傳代,傳到第 3 代時(shí),骨髓干細(xì)胞的純度可達(dá) 95%以上。將培養(yǎng)瓶放入 37℃,5%CO2 的培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)培養(yǎng)。

四、結(jié)果觀察

  第二天可觀察細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)情況,細(xì)胞培養(yǎng)換液時(shí)間一般為 2~3d,根據(jù)細(xì)胞生長(zhǎng)的狀態(tài)和實(shí)驗(yàn)要求來(lái)確定。待細(xì)胞鋪滿器皿底面,即可使用,也可繼續(xù)傳代擴(kuò)大培養(yǎng)或換成維持液。

懸浮細(xì)胞可以直接將培養(yǎng)瓶中的液體吸掉,只留下少量,然后加入新鮮培養(yǎng)液即可。

   當(dāng)細(xì)胞懸液中碎片或顆粒物較多,感覺到比較臟時(shí),可以將懸液移到離心管內(nèi),1000~1500rpm離心 3 分鐘,棄上清,加入約 2ml 培養(yǎng)液,吹打至均勻,滴加 2-3 滴至已加入新鮮培養(yǎng)液的培養(yǎng)瓶中。然后置于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

細(xì)胞傳代培養(yǎng)

五、傳代細(xì)胞培養(yǎng)的實(shí)驗(yàn)步驟及注意事項(xiàng)

1、嚴(yán)格無(wú)菌:

傳代培養(yǎng)時(shí)要注意嚴(yán)格的無(wú)菌操作,并防止細(xì)胞之間的交叉污染。

2、適度消化:

    消化的時(shí)間受消化液的種類、配制時(shí)間、加入培養(yǎng)瓶中的量等諸多因素的影響,酶解消化過(guò)程中要不斷觀察,消化過(guò)度會(huì)對(duì)細(xì)胞造成損害,消化不夠則難于將細(xì)胞解離下來(lái)。對(duì)于貼壁能力較弱,容易脫壁的細(xì)胞,可以不經(jīng)蛋白酶原消化處理和終止消化這兩步,直接對(duì)原代培養(yǎng)物或經(jīng)漂洗后用吸管進(jìn)行吹打使細(xì)胞脫離瓶皿底壁。這種直接吹大的方法對(duì)生命力旺盛的細(xì)胞如某些腫瘤細(xì)胞較為合適。高強(qiáng)度機(jī)械吹打易對(duì)細(xì)胞造成傷害較大,細(xì)胞也常有較大數(shù)量的丟失,因而絕大部分貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞需消化后才能吹打,一般不單獨(dú)采用高強(qiáng)度機(jī)械吹打。

3、把握好消化液的*佳濃度:

   消化液的消化能力是和溶液的 pH、溫度、胰酶濃度及溶液中是否含有 Ca2+, Mg2+和血清等因素有關(guān),實(shí)驗(yàn)采用 0.25%胰蛋白酶+0.1%EDTA 的消化液證明可以很好地消化骨髓干細(xì)胞。

4、吹打細(xì)胞動(dòng)作要輕柔:

    吹打時(shí)用力過(guò)猛會(huì)損傷細(xì)胞??蛇x擇用用大口徑的吸管或者管口較大的一次性耗材,減少對(duì)細(xì)胞的損傷。對(duì)貼壁細(xì)胞消化后的吹打過(guò)程要有序進(jìn)行,要從一邊開始到另一邊結(jié)束,尤其是器皿的四角處,確保瓶皿底壁各處的細(xì)胞都被吹打脫離。

5、傳代次數(shù)不宜過(guò)多:

    傳代數(shù)是指對(duì)培養(yǎng)物傳代的次數(shù),它不等于細(xì)胞分裂的次數(shù)或細(xì)胞的代數(shù),而僅代表傳代操作的次數(shù)。傳代對(duì)細(xì)胞的影響或傷害程度僅次于將活細(xì)胞從生物體內(nèi)取出并進(jìn)行原代培養(yǎng)的程度。只是因?yàn)閭鞔蟮募?xì)胞生長(zhǎng)并不像剛開始原代培養(yǎng)時(shí)那樣緩慢。每經(jīng)過(guò)一次傳代,細(xì)胞的生長(zhǎng)環(huán)境就相應(yīng)發(fā)生一次較大變化。體外生長(zhǎng)的細(xì)胞若處于動(dòng)蕩的生活環(huán)境中,細(xì)胞的遺傳特性往往容易發(fā)生改變。經(jīng)過(guò)多次傳代培養(yǎng)的細(xì)胞,往往容易轉(zhuǎn)化為惡性細(xì)胞。因此,傳代對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)和性狀會(huì)產(chǎn)生不利影響,一般情況下要盡可能減少傳代次數(shù)。

 

       蘇州阿爾法生物實(shí)驗(yàn)器材有限公司13年來(lái),致力于生物科學(xué)實(shí)驗(yàn)室儀器設(shè)備和生物試劑、實(shí)驗(yàn)耗材的 供應(yīng)。其中 包括分子生物學(xué)產(chǎn)品、蛋白質(zhì)組學(xué)、組化免疫學(xué)、細(xì)胞生物學(xué)、生物工程、生物反應(yīng)器等常用的設(shè)備,生物試劑種類齊全,主要包含一抗、二抗、標(biāo)簽抗體、轉(zhuǎn)染試劑、 培養(yǎng)基、胎牛血清、 天根試劑盒、DNA提取試劑盒、ELASIA試劑盒、質(zhì)粒提取 試劑盒;實(shí)驗(yàn)室耗材有離心管、 PCR 管、PCR八聯(lián)管、96 孔板、細(xì)胞培養(yǎng)板、細(xì)胞培養(yǎng)瓶、三角搖瓶、移液槍吸頭、工作站吸頭等 上百余 種實(shí)驗(yàn)耗材,如果了解更多的 細(xì)胞傳代的步驟  可進(jìn)入網(wǎng)站咨詢。